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Huh-7 人肝癌细胞

  • 中文名: Huh-7 人肝癌细胞
货号: IPDB-0033
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产品详情

一、细胞培养操作
  1. HuH-7 细胞适用高糖 DMEM 培养基(含 4.5g/L 葡萄糖、L - 谷氨酰胺),添加成分如下:

  • 10% 优质胎牛血清(FBS),FBS 需经 56℃水浴 30 分钟热灭活处理,灭活后可降低补体活性,减少对细胞生长的潜在影响。

  • 1% 青霉素 - 链霉素混合液,使终浓度为青霉素 100U/mL、链霉素 100μg/mL,以抑制细菌污染。

  • 配制好的培养基经 0.22μm 滤膜过滤除菌,4℃避光保存,保质期为 2 周,以确保营养成分稳定和无菌状态。

  1. 培养环境设定

  • 培养箱条件设定为 37℃恒温、5% CO₂以及饱和湿度(相对湿度 95% 以上)。精确控制 CO₂浓度极为关键,CO₂参与培养基中碳酸氢盐缓冲体系,若浓度异常,会导致培养基 pH 波动(正常 pH 范围 7.2 - 7.4,此时培养基呈淡红色),影响细胞生长,所以需定期校准培养箱参数。

二、细胞复苏操作
  1. 前期准备工作

  • 将完全培养基、PBS 缓冲液提前 30 分钟置于 37℃水浴锅预热,使试剂温度与细胞培养环境温度一致,减少温度刺激对细胞的损伤。

  • 准备好 15mL 离心管、T25 或 T75 培养瓶(依据复苏细胞量选择,若复苏细胞量较少,T25 培养瓶更合适;若复苏细胞量较多或后续需大量培养,可选用 T75 培养瓶)、移液枪及无菌枪头。

  • 开启生物安全柜,用 75% 酒精擦拭操作台,随后紫外消毒 20 分钟,营造无菌操作环境,防止微生物污染细胞。

  1. 复苏关键步骤

  • 从液氮罐中迅速取出冻存管,快速投入 37℃水浴中,持续轻轻晃动,确保在 1 - 2 分钟内细胞悬液完全融化,避免冰晶残留对细胞造成物理性损伤。

  • 用 75% 酒精对冻存管外壁全面消毒后,将其移入生物安全柜。将细胞悬液缓慢注入含有 5mL 预热培养基的离心管中,以 1000rpm 转速离心 5 分钟,离心后弃去上清液,从而去除冻存液中的 DMSO,因其对细胞有一定毒性。

  • 用 2mL 完全培养基轻柔重悬细胞沉淀,将重悬后的细胞接种至 T25 培养瓶,再补加培养基至 5mL,轻轻摇匀,使细胞均匀分布于培养瓶中。将培养瓶水平放置于培养箱内,24 小时内禁止移动,利于细胞贴壁。

  1. 复苏后观察要点

  • 复苏 24 小时后,在显微镜下观察细胞状态。若细胞贴壁良好,呈现多边形上皮样,排列紧密,说明复苏较为成功,此时更换新鲜培养基,去除死亡细胞及残留杂质。

  • 若贴壁率低于 50%,可延长至 48 小时再换液,期间尽量减少对培养瓶的移动和观察,为细胞提供稳定的贴壁环境。

三、细胞传代操作
  1. 把握传代时机

  • 当 HuH-7 细胞融合度达到 70% - 80% 时,需及时进行传代。若细胞过度融合,会引发接触抑制,影响细胞增殖活性,一般每 2 - 3 天需关注细胞融合度,判断是否达到传代标准。

  1. 详细传代步骤

  • 弃去培养瓶中的旧培养基,用 3mL PBS 缓冲液轻柔冲洗细胞 2 次,以彻底去除残留血清,因为血清中的成分会抑制胰酶活性,影响细胞消化效果。

  • 向培养瓶中加入 1mL 0.25% 胰蛋白酶 - EDTA 溶液,轻轻晃动培养瓶,使胰酶均匀覆盖细胞层,将培养瓶放入

  • 37℃培养箱进行消化,消化时间通常为 3 - 4 分钟。但由于不同品牌胰酶活性存在差异,实际操作时需在显微

  • 镜下密切观察,当细胞边缘收缩、间隙增大、部分细胞呈圆形悬浮,且有部分细胞自然滑落时,立即加入 2mL

  • 完全培养基终止消化。

  • 用移液枪反复轻柔吹打瓶壁,将细胞吹打成单细胞悬液,动作要轻柔,避免产生大量气泡,以免损伤细胞。将细胞悬液收集至离心管,以 1000rpm 转速离心 5 分钟,弃去上清液。

  • 按照 1:3 - 1:5 的比例(可根据细胞实际增殖速度适当调整,若细胞增殖较快,可采用较大传代比例;若增殖较慢,则采用较小传代比例),用新鲜培养基重悬细胞,接种至新的培养瓶(如 T75 培养瓶,添加 10 - 15mL 培养基)。接种后轻轻摇匀,放回培养箱继续培养,并准确记录传代日期和代数。建议传代不超过 40 代,防止细胞特性发生漂移,影响实验结果准确性。

四、细胞冻存操作
  1. 冻存液配制

  • 推荐使用两种冻存液配方:

  • 92% FBS + 8% DMSO,该配方能为细胞提供丰富营养物质,且 DMSO 可有效降低细胞内冰晶形成,保护细胞。

  • 92% 完全培养基 + 8% DMSO,同样能满足细胞冻存需求。冻存液需现配现用,并放置在冰上预冷,减少对细胞的损伤。

  1. 冻存具体流程

  • 选取处于对数生长期、状态良好的细胞,按照传代步骤进行消化和离心。

  • 用预冷的冻存液重悬细胞,将细胞密度调整至 2×10⁶ - 5×10⁶ cells/mL,以保证冻存细胞有足够活性和数量。

  • 将细胞悬液分装至无菌冻存管,每管 1mL,在冻存管上清晰标记细胞名称、代数、冻存日期等信息。

  • 采用程序降温法:先将冻存管放入 4℃冰箱放置 30 分钟,使细胞适应温度初步降低;再转移至 - 20℃冰箱放

  • 置 2 小时;随后放入 - 80℃冰箱过夜;最后转入液氮罐长期保存。若无程序降温盒,可将冻存管放入泡沫盒

  • (泡沫盒可起到一定缓冲降温作用,不使用则细胞复苏活率低),4℃静置 5 - 10 分钟,再移至 - 20℃静置 2

  • 小时后转入 - 80℃过夜,次日转入液氮保存。液氮罐中应按区域存放冻存管,定期检查并补充液氮,确保液位

  • 始终覆盖冻存管,维持低温环境。



售后服务

 

重发标准


(1)细胞运输问题,如细胞丢失、瓶身破损、培养瓶严重漏液,冻存管内容物已融化;

(2)细胞污染问题,收到细胞7天内,发现细胞污染问题,经核实无误;

(3)细胞生长问题,收到细胞7天内,发现细胞不增殖,经核实无误。


不予重发


(1)收到细胞时间超过7天以上的;

(2)使用非我们推荐的细胞完培;

(3)细胞培养时经过其他处理导致细胞出现问题的;

(4)客户操作失误导致的细胞污染、细胞状态不好的;

(5)细胞冻存后再复苏的细胞;

(6)未能提供真实清晰细胞培养前3天的细胞状态照片。



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